КОНСЕРВАТИВНОЕ ЛЕЧЕНИЕ НЕЙРОТРОФИЧЕСКИХ КЕРАТИТОВ

Нейротрофический   кератит (НК) представляет  собой дегенеративное заболевание роговицы, которое характеризуется определенным симптомокомплексом, включающим в себя снижение ее чувствительности, спонтанное нарушение стабильности эпителия роговицы со значительным ухудшением процессов заживления. Развитие кератопатии (КП) сопровождается такими жалобами,  как колебание остроты зрения, светобоязнь и слезотечение, а также болевыми ощущениями различной степени выраженности. Являясь одной из наиболее плотно иннервируемых тканей организма, роговица достаточно остро реагирует на нарушения иннервации с развитием тяжелейших трофических кератитов и язв.

Причин развития нейротрофических изменений роговицы достаточно много, и находятся они не только в плоскости офтальмопатологий. Среди глазных  причин  развития  НК можно перечислить герпетический  кератит, состояние после некоторых глазных операций, ношения контактных линз. Среди неофтальмологических  причин развития НК ведущее место занимают нейрохирургические операции, длительные наркозы, состояния после острого нарушения мозгового кровообращения. Диагностика  НК является  достаточно кропотливой работой, сочетающей в себе тщательный сбор анамнеза, детальный офтальмологический осмотр с оценкой чувствительности роговицы и высокотехнологичную диагностику с использованием конфокальной биомикроскопии.

В зависимости от степени  тяжести НК подразделяются на кератопатию, сливные эрозии роговицы и язвы роговицы. Алгоритм терапии НК должен быть основан на тяжести клинической картины и направлен на ускорение заживления роговицы и предотвращение прогрессирования заболевания с развитием поражений более глубоких ее слоев. Лечение может быть как консервативным, так и хирургическим, таким как трансплантации амниотической мембраны  или конъюнктивального лоскута. В данной статье представлены данные клинических наблюдений потенциально перспективного в терапии  НК препарата Визомитин.

1. Tervo K, Tervo T, Palkama A. Preand postnatal development of catecholamine-containing and cholinesterase-positive nerves of the rat cornea and iris. Anatomy and embryology, 1978, 154(3): 253-265.

2. Tervo T, Palkama A. Innervation of the rabbit cornea. A histochemical and electron-microscopic study. Acta anatomica, 1978, 102(2): 164-175.

3. Marfurt CF, Kingsley RE, Echtenkamp SE. Sensory and sympathetic innervation of the mammalian cornea. A retrograde tracing study. Investigative ophthalmology & visual science, 1989, 30(3): 461-472.

4. Suuronen EJ, Nakamura M, Watsky MA, Stys PK, Muller LJ, Munger R, Shinozaki N, Griffith M. Innervated human corneal equivalents as in vitro models for nerve-target cell interactions. FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology, 2004, 18(1): 170-172.

5. Muller LJ, Marfurt CF, Kruse F, Tervo TM. Corneal nerves: structure, contents and function. Experimental eye research, 2003, 76(5): 521-542.

6. Acosta MC, Tan ME, Belmonte C, Gallar J, Sensations evoked by selective mechanical, chemical, and thermal stimulation of the conjunctiva and cornea. Investigative ophthalmology & visual science, 2001, 42(9): 2063-2067.

7. Mikulec AA, Tanelian DL. CGRP increases the rate of corneal re-epithelialization in an in vitro whole mount preparation. Journal of ocular pharmacology and therapeutics: the official journal of the Association for Ocular Pharmacology and Therapeutics, 1996, 12(4): 417-423.

8. Reid TW, Murphy CJ, Iwahashi CK, Foster BA, Mannis MJ. Stimulation of epithelial cell growth by the neuropeptide substance P. Journal of cellular biochemistry, 1993, 52(4): 476-485.

9. Ruskell, GL. Changes in nerve terminals and acini of the lacrimal gland and changes in secretion induced by autonomic denervation. Zeitschrift fur Zellforschung und mikroskopische Anatomie, 1969, 94(2): 261-281.

10. LeDoux MS, Zhou Q, Murphy RB, Greene ML, Ryan P. Parasympathetic innervation of the meibomian glands in rats. Investigative ophthalmology & visual science, 2001, 42(11): 2434-2441.

11. De Haas EH. Desiccation of cornea and conjunctiva after sensory denervation: Significance of desiccation for pathogenesis of neuroparalytic keratitis. Archives of ophthalmology, 1962, 67(4): 439-452.

12. Alsuhaibani AH. Facial nerve palsy: providing eye comfort and cosmesis. Middle East African journal of ophthalmology, 2010, 17(2): 142-147.

13. Нероев В.В., Яни Е.В. Результаты работы по целевой программе «ликвидация устранимой слепоты вследствие роговичной и воспалительной патологии». Сборник материалов VII Российского международного симпозиума «Ликвидация устранимой слепоты: всемирная инициатива ВОЗ. Ликвидация устранимой слепоты вследствие роговичной и воспалительной патологии», 2015: 22-31.

14. Антоненко Ю.Н., Аветисян А.В., Бакеева Л.Е. и др. Производное пластохинона, адресованное в митохондрии, как средство, прерывающее программу старения. Катионные производные пластохинона: синтез и исследование in vitro. Биохимия, 2008, 73(12): 1589-1606.

15. Skulachev MV, Antonenko YN, Anisimov VN et al. Mitochondrial-targeted plastoquinone derivatives. Effect on senescence and acute agerelated pathologies. Current Drug Targets, 2011, 12(6): 800-826.

16. Яни Е.В., Сенин И.И., Скулачев М.В. Перспективы применения в офтальмологии нового класса лекарственных препаратов – митохондриально-адресованных антиоксидантов. Сборник трудов «VI Российский общенациональный офтальмологический форум». М., 2013: 668-670.

17. Нероев В.В., Орлова Е.Н., Ибрагимова Д.И., Яни Е.В., Вахова Е.С. Патогенетически обоснованный дифференцированный подход к диагностике и терапии различных клинических форм поражения роговицы при ССГ. Российский Офтальмологический Журнал, 2014, 7(4): 81-86.

18. Brzheskiy VV, Efimova EL, Vorontsova TN, Alekseev VN, Gusarevich OG, Shaidurova KN et al. Results of a Multicenter, Randomized, Double-Masked, Placebo-Controlled Clinical Study of the Efficacy and Safety of Visomitin Eye Drops in Patients with Dry Eye Syndrome. Advances in Therapy, 2015, 32: 1263-79.