Preview

Медицинский Совет

Расширенный поиск

Синергизм компонентов как основной подход к формированию пробиотического комплекса

https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-5-120-127.

Полный текст:

Аннотация

Разработка пробиотической продукции, содержащей несколько штаммов: Bifidombacterium lactis BI-04, Lactobacillus acidophilus La-14 и Lactobacillus rhamnosus Lr-32, является перспективным направлением, т. к. увеличивает потенциал профилактического воздействия. Согласно результатам экспериментальных исследований in vitro, штаммы Lactobacillus acidophilus La-14, L. rhamnosus Lr-32, Bifidombacterium lactis BI-04 устойчивы к условиям низкого рН и выживают при наличии желчи в концентрациях, присутствующих в двенадцатиперстной кишке. Демонстрируют высокую адгезию к линиям эпителиальных клеток человека - Caco-2 и HT-29. В экспериментах invitro доказано ингибирующее действие штаммов L. acidophilusLa-14, L. rhamnosusLr-32 на следующие патогены: Salmonellatyphimurium, Staphylococcusaureus, Escherichiacoli, Listeriamonocytogenes. Комбинация пробиотических штаммов с подтвержденными эффектами invitro и invivo с пребиотиком и витаминами группы В является рациональной. Дополнительные благоприятные условия в виде наличия питательной среды (пребиотик), достаточное энергообеспечение (коферментные витамины) способствуют повышению колонизационного потенциала. Инулин и витамины группы В обладают собственной активностью, которая синергична с активностью пробиотических микроорганизмов. Витамин B12 имеет в своей структуре порфириноподобное, или корриновое, кольцо, связанное с атомом кобальта четырьмя координационными связями, и является представителем группы корриноидов. Микроорганизмы, заселяющие желудочнокишечный тракт человека, в качестве кофакторов используют экзогенно поступившие корриноиды кобаламина. Целесообразно сопровождать применение пробиотиков дополнительным экзогенным поступлением в организм витамина В12, т. к. микробные сообщества кишечника являются вероятными конкурентами в потреблении кобаламина. Рациональный подбор компонентов способствует максимальной реализации потенциальных профилактических эффектов пробиотических микроорганизмов.

Об авторах

Е. В. Ших
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Россия

Ших Евгения Валерьевна - доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней.

119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



С. А. Соловьева
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Россия

Соловьева Светлана Александровна - кандидат медицинских наук, ассистент, кафедра клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней.

119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



А. В. Перков
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Россия

Перков Александр Владимирович - ассистент, кафедра клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней.

119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



Список литературы

1. Никонов Е.Л., Попова Е.Л. (ред.). Микробиота. М.: Медиа Сфера; 2019. 255 с. Режим доступа: https//www.eLibrary.ru/item.asp?id=38244535.

2. VenugopaLan V., Shriner K.A., Wong-Beringer A. Regulatory Oversight and Safety of Probiotic Use. Emerging Infectious Diseases. 2010;16(11):1661-1665. doi: 10.3201/eid1611.100574.

3. Binns N. Probiotics, Prebiotics and the gut microbiota. Brussels; 2013. 32 p. Available at: https://iLsi.org/europe/wp-content/upLoads/sites/3/2016/05/Prebiotics-Probiotics.pdf.

4. Andoh A. Physiological RoLe of Gut Microbiota for Maintaining Human Health. Digestion. 2016;93(3):176-181. doi: 10,1159/000444066.

5. Потапов В.А. Пробиотики в гинекологии. Очередная мода или осознанная необходимость (аналитический обзор). З турботою про ж'!нку. 2015;(1):10-15. Режим доступа: https://organosyn.com.ua/down-Loads/0000/0623/articLe_8_5.pdf.

6. Gomaa A., Verghese M., Herring J. Inhibition of AntimicrobiaL Resistant SaLmoneLLa HeideLberg by a Synbiotic Combination of Prebiotics and Probiotics in an in Vitro ModeL (P20-011-19). Curr Dev Nutr. 2019;3(1):nzz040. doi: 10.1093/cdn/nzz040.P20-011-19.

7. Lyra A., HiLLiLa M., Huttunen T., Mannikko S., TaaLikka M., TenniLaet J. et aL. IrritabLe boweL syndrome symptom severity improves equaLLy with probiotic and pLacebo. World J Gastroenterol. 2016;22(48):10631-10642. doi: 10.3748/wjg.v22.i48.10631.

8. Ouwehand A.C., DongLian C., Weijian X., Stewart M., Ni J., Stewart T., MiLLer L.E. Probiotics reduce symptoms of antibiotic use in a hospitaL setting: a randomized dose response study. Vaccine. 2014;32(4):458-463. doi: 10.1016/j.vaccine.2013.11.053.

9. Forssten S., Evans M., WiLson D., Ouwehand A.C. InfLuence of a probiotic mixture on antibiotic induced microbiota disturbances. World J Gastroenterol. 2014;20(33):11878-11885. doi: 10.3748/wjg.v20.i33.11878.

10. Guarner F., Khan A.G., Garisch J., Fedorak R., GangL A., Garisch J. и соавт. Пробиотики и пребиотики. Глобальные практические рекомендации Всемирной Гастроэнтерологической Организации; 2017. 37 с. Режим доступа: https://www.worLdgastroenteroLogy.org/UserFiLes/fiLe/guideLines/ probiotics-and-prebiotics-russian-2017.pdf.

11. Turroni S., VitaLi B., BendazzoLi C., CandeLa M., Gotti R., Federici F., Pirovano F., Brigid P OxaLate consumption by LactobaciLLi: evaLuation of oxaLyL-CoA decarboxyLase and formyL-CoA transferase activity in Lactobacillus acidophilus. J Appl Microbiol. 2007;103(5):1600-1609. doi: 10.1111/j.1365-2672.2007.03388.x.

12. Luo X.Y., Lun Y.Z., Gao W., Hu H.B., Wang Q., Liu Y, Yin J.S., Jiang S.J. Effects of spent cuLture supernatant of Lactobacillus acidophilus on intestinaL fLora in mice with antibiotic- associated diarrhoea. Shijie Huaren Xiaohua Zazhi. 2006;14(19):1870-1873. doi: 10.11569/wcjd.v14.i19.1870.

13. Cani P.D. Human gut microbiome: hopes, threats and promises. Gut. 2018;67(9):1716-1725. doi: 10.1136/gutjnL-2018-316723.

14. Храмцов А.Г., Рябцева С.А., Будкевич Р.О., Ахмедова В.Р., Родная А.Б., Маругина Е.В. Пребиотики как функциональные пищевые ингредиенты: терминология, критерии выбора и сравнительной оценки, классификация. Вопросы питания. 2018;87(1):5-17. doi: 10.24411/0042-8833-2018-10001.

15. Pineiro M., Asp N.G., Reid G., MacfarLane S., Morelli L., Brunser O., Tuohy K. FAO technical meeting on prebiotics. J Clin Gastroenterol. 2008;42(3, 2):156-159. doi: 10.1097/MCG.0b013e31817f184e.

16. Roberfroid M. Prebiotics: the concept revisited. J Nutr. 2007;137(3):830-837. doi: 10.1093/jn/137.3.830S.

17. Буторова Л.И. Новые возможности профилактики и лечения хронического запора комплексными пребиотическими препаратами: выбор оптимального сочетания. Гастроэнтерология Санкт-Петербурга. 2012;(4):2-10. Режим доступа: http://gastroforum.ru/wp-content/uploads/2013/06/GSP_4_2012_P1-26_2-10.pdf.

18. Guess N.D., Dornhorst A., Oliver N., Bell J.D., Thomas E.L., Frost G.S. A randomized controlled trial: the effect of inulin on weight management and ectopic fat in subjects with prediabetes. Nutr Metab (Lond). 2015;12:36. doi: 10.1186/s12986-015-0033-2.

19. Копылова Д.В., Кошелев П.И. Возможности применения масляной кислоты и инсулина в раннем восстановительном периоде после холецистэктомии. Лечащий врач. 2013(2):121-125. Режим доступа: https://www.lvrach.ru/2013/02/15435641/.

20. Degnan PH., Taga M.E., Goodman A.L. Vitamin B12 as a Modulator of Gut Microbial Ecology. Cell Metabolism. 2014;20(5):769-778. doi: 10.1016/j.cmet.2014.10.002.

21. Keller S., Ruetz M., Kunze C., Krautler B., Diekert G., Schubert T. Exogenous 5,6-dimethylbenzimidazole caused production of a nonfunctional tetrachloroethene reductive dehalogenase in Sulfurospirillum multivorans. Environ Microbiol. 2014;16(11):3361-3369. doi: 10.1111/1462-2920.12268.

22. Nielsen MJ., Rasmussen M.R., Andersen C.B., Nexo E., Moestrup S.K. Vitamin B12 transport from food to the body's cells—a sophisticated, multistep pathway. Nature Rev Gastroenterol Hepatol. 2012;(9):345-354. doi: 10.1038/nrgastro.2012.76.

23. Men Y., Seth E.C., Yi S., Crofts T.S., Allen R.H., Taga M.E., Alvarez-Cohen L. Identification of specific corrinoids reveals corrinoid modification in dechlorinating microbial communities. Environ Microbiol. 2015;17(12):4873-4884. doi: 10.1111/1462-2920.12500.

24. Degnan PH., Barry N.A., Mok K.C., Taga M.E., Goodman A.L. Human gut microbes use multiple transporters to distinguish vitamin B12 analogs and compete in the gut. Cell Host Microbe. 2014;15(1):47-57. doi: 10.1016/j.chom.2013.12.007.

25. Ших Е.В., Махова А.А. Витамины в клинической практике: научнопрактическое издание. М.: Практическая медицина; 2014. 367 с. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=25878355.

26. Громова О.А., Торшин И.Ю., Гусев Е.И. Синергидные нейропротекторные эффекты тиамина, пиридоксина и цианокобаламина в рамках протеома человека. Фармакокинетика и фармакодинамика. 2017;(1):40-51. Режим доступа: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/7/7.


Для цитирования:


Ших Е.В., Соловьева С.А., Перков А.В. Синергизм компонентов как основной подход к формированию пробиотического комплекса. Медицинский Совет. 2020;(5):120-127. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-5-120-127.

For citation:


Shikh E.V., Solovieva S.A., Perkov A.V. Synergism of components as the main approach to creation of a probiotic complex. Meditsinskiy sovet = Medical Council. 2020;(5):120-127. (In Russ.) https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-5-120-127.

Просмотров: 42


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2079-701X (Print)
ISSN 2658-5790 (Online)