Гистологическая оценка влияния плазмы крови, обогащенной тромбоцитарными факторами роста, на барабанную перепонку

Введение. Перспективным методом лечения острой посттравматической перфорации барабанной перепонки является применение плазмы крови, обогащенной тромбоцитарными факторами роста (ПКОТФР).

Цель исследования. Изучить микроскопическую картину тканей перфорированной барабанной перепонки после введения в область перфорации барабанной перепонки плазмы крови, обогащенной тромбоцитарными факторами роста в эксперименте.

Материалы и методы. Обследовали 36 крыс (72 барабанные перепонки). Животных поделили на 2 группы – основную и контрольную. При помощи стерильной игры произвели перфорацию барабанной перепонки крысам обеих групп. Животным основной группы ввели однократно аппликационно аутоплазму крови, обогащенную тромбоцитарными факторами роста, в область перфорации барабанной перепонки. Животным контрольной группы произвели лишь динамическое наблюдение. Крыс вывели из эксперимента партиями по 6 особей на 5-, 10-, 15-е сут. после перфорации барабанной перепонки, затем произвели гистологическую оценку регенерации тканей барабанных перепонок.

Результаты. У животных основной группы на 5-е сут. достоверно реже регистрировали отек, дезорганизацию соединительной ткани, чем у животных контрольной группы (р ≤ 0,05). Фибробластную инфильтрацию тканей барабанной перепонки достоверно чаще отмечали у крыс основной группы по сравнению с крысами контрольной группы (р ≤ 0,05). У крыс основной группы на 10-е сут. отек и дезорганизацию соединительной ткани барабанных перепонок отмечали достоверно реже, чем у крыс контрольной группы (р ≤ 0,05). Признаки фибробластной инфильтрации и неоангиогенеза в те же сроки у животных основной группы выявили достоверно чаще в отличие от крыс контрольной группы (р ≤ 0,05). У животных основной группы на 15-е сут. фибробластную инфильтрацию и неоангиогенез выявили во всех случаях наблюдения, что достоверно превышало соответствующие показатели в контрольной группе, а лейкоцитарную инфильтрацию у крыс основной группы, в отличие от предыдущих этапов исследования, отмечали достоверно реже, чем у крыс контрольной группы (р ≤ 0,05).

Заключение. Более раннюю и полную регенерацию поврежденных тканей барабанной перепонки в условиях ее травматической перфорации отметили у крыс основной группы под влиянием ПКОТФР. У крыс основной группы визуализировали более организованные коллагеновые волокна, наличие базофильных лейкоцитов, признаки неоангиогенеза и обширные поля фибробластов.

1. Гаров Е.В., Крюков А.И., Зеленкова В.Н., Сидорина Н.Г., Калошина А.С. Атипичное течение воспаления в среднем ухе. Вестник оториноларингологии. 2017;82(4):9–15. doi: 10.17116/otorino20178249-15.

2. Гуров, А.В., Ельчанинов А.В., Мурзаханова З.В. Применение плазмы крови, обогащенной тромбоцитарными факторами роста, при экспериментальной перфорации барабанной перепонки. Медицинский совет. 2019;(20):108–114. doi: 10.21518/2079-701X-2019-20-108-114.

3. Полякова С.Д., Батенева Н.Н., Попова Б.А. Комплексный подход к диагностике и лечению травматических отитов. Российская оториноларингология. 2009;(4):114–118. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=14617263.

4. Feidt H., Federspil P. Personal studies on the current spectrum of pathogenic bacteria in otitisexterna and chronic otitis media. Laryngorhinootologie. 1989;68(7):401–406. doi: 10.1055/s-2007-998363.

5. Амонов Ш.Э., Саидов С.Х., Амонов А.Ш. Комплексная диагностика экссудативного среднего отита у детей. Российская оториноларингология. 2012;(5):14–16. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=18410624.

6. Семенов Ф.В. Отомикроскопическое обследование больных с патологией среднего уха. Вестник оториноларингологии. 2001;(4):48–50. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=19730876.

7. Крюков, А.И., Гуров А.В., Ельчанинов А.В., Мурзаханова З.В., Муратов Д.Л. Применение плазмы крови, обогащенной тромбоцитарными факторами роста, при экспериментальной перфорации барабанной перепонки. Вестник оториноларингологии. 2019;84(6):17–21. doi: 10.17116/otorino20198406117.

8. Gans H. Nachbehandlung und Nachsorge bei Operationen am Ohr. HNO Praxis Heute. 1994;36(5):41–62. doi: 10.1007/978-3-642-78791-1_3.

9. Кротов Ю.А. Мирингопластика при обширных перфорациях барабанной перепонки. Вестник оториноларингологии. 2001;(5):57–59. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=29987753.

10. Onal K., Kazikdas K.C., Uğuz M.Z., Gursoy S.T., Gokce H. A multivariate analysis of otological, surgical and patient-related factors in determining success in myringoplasty. Clin Otolaryngol. 2005;30(2):115–120. doi: 10.1111/j.1365-2273.2004.00947.x.

11. Xu Z. Analysis on characters of 220 cases of tympani membrane perforated. Fa Yi Xue Za Zhi. 2001;17(1):28–62. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12533889.

12. Gilbert T.W., Freund J.M., Badylak S.F. Quantification of DNA in biologic scaffold materials. J Surg Res. 2009;152(1):135–139. doi: 10.1016/j.jss.2008.02.013.

13. Гуров А.В., Михалева Л.М., Гордиенко М.В., Ермолаев А.Г., Мурзаханова З.В., Муратов Д.Л. Современные методы оценки морфофункционального состояния различных органов и тканей в оториноларингологии. Медицинский совет. 2019;(8):43–47. doi: 10.21518/2079-701X-2019-8-43-47.

14. Хелминская Н.М., Кравец В.И., Гончарова А.В., Краснов Н.М. Об эффективности и перспективах использования плазмы крови в комплексном замещении ограниченных костных дефектов челюстей. Медицинский альманах. 2015;(3):199–202. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=24361078.

15. Гончарова О.Г., Попова Л.П. Применение обогощенной тромбоцитами аутоплазмы при операциях на среднем ухе. Российская оториноларингология. 2009;(1):67–70. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=14565095.

16. Hajiioannou J.K, Bizaki A., Fragiadakis G., Bourolias C., Spanakis I., Chlouverakis G. Optimal time for nasal packing removal after septoplasty. A comparative study. Rhinology. 2007;45(1):68–71. Available at: https://www.pubfacts.com/detail/17432074/Optimal-time-for-nasal-packingremoval-after-septoplasty-A-comparative-study.

17. Eppley B. Pietrzak W., Blanton M. Platelet-rich plasma: a review of biology and applications in plastic surgery. Plast ReconstrSurg. 2006;118(6):147е–159е. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17051095/.

18. Yaşar M., Kaya A., Karaman H., Kavugudurmaz M., Polat H., Sağıt M., Özcan İ. Potential Curative Role of Hypericum Perforatum in an Experimental Rat Model of TympanicMembrane Perforation. J Int Adv Otol. 2016;12(3):252– 256. doi: 10.5152/iao.2016.1612.

19. Weyrich A.S., Schwertz H., Kraiss L.W., Zimmerman G.A. Protein synthesis by platelets: historical and new perspectives. J Thromb Haemost. 2009;7(2):241–246. doi: 10.1111/j.1538-7836.2008.03211.x.

20. Anitua E., Andia I., Sanchez M., Azofra J., del Mar Zalduendo M., de la Fuente M. et al. Autologous preparations rich in growth factors promote proliferation and induce VEGF and HGF production by human tendon cells in culture. J Orthop Res. 2009;23(2):281–286. doi: 10.1016/j.orthres.2004.08.015.

21. Karataylı Özgürsoy S., Tunçkaşık M., Tunçkaşık F., Akıncıoğlu E., Doğan H., Kocatürk S. Platelet-Rich Plasma Application for Acute Tympanic Membrane Perforations. J Int Adv Otol. 2017;13(2):195–199. doi: 10.5152/iao.2016.2533.

22. Ayala-Montes de Oca A., Alla S.N., López-Valdés J.C. Effectiveness of topical phenytoin therapy versus platelet-rich plasma for tympanic perforations closure: Comparative study. Rev Med Hosp Gen Méx. 2016;79(4):183– 188. doi: 10.1016/J.HGMX.2016.05.006.

23. Costa-Almeida R., Soares R., Granja P.L. Fibroblasts as maestros orchestrating tissue regeneration. J Tissue Eng Regen Med. 2018;12(1):240–251. doi: 10.1002/term.2405.

24. Hinck A.P., Mueller T.D., Springer T.A. Structural Biology and Evolution of the TGF-β Family. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2016;8(12):a022103. doi: 10.1101/cshperspect.a022103.