Клиническая манифестация эпителиальной дистрофии роговицы после LASIK

Современная кераторефракционная хирургия обеспечивает высокую эффективность, безопасность, предсказуемость, стабильность клинико-функциональных результатов коррекции различных видов аметропий. В процессе предоперационной диагностики выполняют стандартные и специальные методы обследования, позволяющие исключить заболевания роговицы и определить оптимальную технологию лазерной коррекции зрения в каждом конкретном случае. Однако выявление субклинических форм дистрофий и дегенераций роговицы не всегда возможно в ходе стандартной предоперационной диагностики. В связи с чем целью работы является представление клинического случая манифестации эпителиальной дистрофии роговицы после лазерной коррекции зрения. В статье описан редкий случай клинической манифестации эпителиальной дистрофии роговицы после эксимерлазерной коррекции зрения, которую удалось компенсировать на фоне применения противовоспалительной и корнеопротекторной терапии. Также отдельно описаны диагностические исследования, включающие кератотопографическое исследование, оптическую когерентную томографию переднего отрезка глаз и лазерную конфокальную микроскопию роговицы, отмечена роль данных методов исследования в ранней диагностике дистрофических процессов роговицы. Лазерную конфокальную микроскопию роговицы относят к малоинвазивным диагностическим манипуляциям, позволяющим в режиме реального времени проводить анализ всех слоев роговицы на уровне, близком к гистологическому. В последнее время данный метод диагностики переднего отрезка глаза нашел широкое применение в клинической практике. Ведение пациентов с дистрофиями роговицы требует повышенного внимания со стороны врача-офтальмолога, в качестве назначаемого лечения актуально проведение противовоспалительной и кератопротекторной терапии роговицы с последующим длительным динамическим контролем состояния глаза.

1. Wen D., McAlinden C., Flitcroft I., Tu R., Wang Q., Alió J. et al. Postoperative Efficacy, Predictability, Safety, and Visual Quality of Laser Corneal Refractive Surgery: A Network Meta-analysis. Am J Ophthalmol. 2017;(178):65–78. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2017.03.013.

2. Lau Y.T., Shih K.C., Tse R.H., Chan T.C., Jhanji V. Comparison of Visual, Refractive and Ocular Surface Outcomes Between Small Incision Lenticule Extraction and Laser-Assisted In Situ Keratomileusis for Myopia and Myopic Astigmatism. Ophthalmol Ther. 2019;8(3):373–386. https://doi.org/10.1007/s40123-019-0202-x.

3. Sahay P., Bafna R.K., Reddy J.C., Vajpayee R.B., Sharma N. Complications of laser-assisted in situ keratomileusis. Indian J Ophthalmol. 2021;69(7):1658–1669. https://doi.org/10.4103/ijo.ijo_1872_20.

4. Wang B., Naidu R.K., Chu R., Dai J., Qu X., Zhou H. Dry Eye Disease following Refractive Surgery: A 12-Month Follow-Up of SMILE versus FS-LASIK in High Myopia. J Ophthalmol. 2015;(2015):132417. https://doi.org/10.1155/2015/132417.

5. Wu P.Y., Tsui M.C., Chang C.K., Chang H.W., Chen W.L. Epithelial basement membrane dystrophy after femtosecond laser-assisted LASIK successfully treated with in vivo confocal microscopy-assisted photorefractive keratectomy. J Cataract Refract Surg. 2020;46(12):e17–e19. https://doi.org/10.1097/j.jcrs.0000000000000354.

6. Pérez-Santonja J.J., Galal A., Cardona C., Artola A., Ruíz-Moreno J.M., Alió J.L. Severe corneal epithelial sloughing during laser in situ keratomileusis as a presenting sign for silent epithelial basement membrane dystrophy. J Cataract Refract Surg. 2005;31(10):1932–1937. https://doi.org/10.1016/j.jcrs.2005.06.041.

7. Woreta F.A., Davis G.W., Bower K.S. LASIK and surface ablation in corneal dystrophies. Surv Ophthalmol. 2015;60(2):115–122. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2014.08.003.

8. Kymionis G.D., Diakonis V.F., Bouzoukis D.I., Yoo S.H., Pallikaris I.G. Photorefractive keratectomy in a patient with epithelial basement membrane dystrophy. Semin Ophthalmol. 2007;22(1):59–61. https://doi.org/10.1080/08820530601162768.

9. Weiss J.S., Møller H.U., Aldave A.J., Seitz B., Bredrup C., Kivelä T. et al. IC3D classification of corneal dystrophies--edition 2. Cornea. 2015;34(2):117–159. https://doi.org/10.1097/ico.0000000000000307.

10. Cogan D.G., Donaldson D.D., Kuwabara T., Marshall D. Microcystic dystrophy of the corneal epithelium. Trans Am Ophthalmol Soc. 1964;(62):213–225. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14269893/.

11. Lin Z.N., Chen J., Cui H.P. Characteristics of corneal dystrophies: a review from clinical, histological and genetic perspectives. Int J Ophthalmol. 2016;9(6):904–913. https://doi.org/10.18240/ijo.2016.06.20.

12. Труфанов С.В., Текеева Л.Ю., Саловарова Е.П., Баг Р.З., Суханова Е.В. Дистрофии роговицы. Вестник офтальмологии. 2018;134(5):118–125. https://doi.org/10.17116/oftalma2018134051118.

13. Miller D.D., Hasan S.A., Simmons N.L., Stewart M.W. Recurrent corneal erosion: a comprehensive review. Clin Ophthalmol. 2019;(13):325–335. https://doi.org/10.2147/opth.s157430.

14. Труфанов С.В., Текеева Л.Ю., Сурнина З.В., Маложен С.А. Морфологические изменения роговицы при синдроме рецидивирующей эрозии после шлифовки боуменовой мембраны алмазным бором. Вестник офтальмологии. 2019;135(5):24–30. https://doi.org/10.17116/oftalma201913505124.

15. Kobayashi A., Yokogawa H., Sugiyama K. In vivo laser confocal microscopy findings in patients with map-dot-fingerprint (epithelial basement membrane) dystrophy. Clin Ophthalmol. 2012;(6):1187–1190. https://doi.org/10.2147/opth.s34196.

16. Ghouali W., Sandali O., Ameline B., Basli E., Goemaere I., Borderie V., Laroche L. Dystrophie de Cogan révélée après chirurgie réfractive de type Lasik. J Fr Ophtalmol. 2013;36(8):e137–140. https://doi.org/10.1016/j.jfo.2012.11.017.

17. Woreta F.A., Davis G.W., Bower K.S. LASIK and surface ablation in corneal dystrophies. Surv Ophthalmol. 2015;60(2):115–122. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2014.08.003.

18. Mehra S., Tavakoli M., Kallinikos P.A., Efron N., Boulton A.J., Augustine T., Malik R.A. Corneal confocal microscopy detects early nerve regeneration after pancreas transplantation in patients with type 1 diabetes. Diabetes Care. 2007;30(10):2608–2612. https://doi.org/10.2337/dc07-0870.

19. Ziegler D., Papanas N., Zhivov A., Allgeier S., Winter K., Ziegler I. et al. Early detection of nerve fiber loss by corneal confocal microscopy and skin biopsy in recently diagnosed type 2 diabetes. Diabetes. 2014;63(7):2454–2463. https://doi.org/10.2337/db13-1819.

20. Аветисов С.Э., Новиков И.А., Махотин С.С., Сурнина З.В. Новый принцип морфометрического исследования нервных волокон роговицы на основе конфокальной биомикроскопии при сахарном диабете. Вестник офтальмологии. 2015;131(4):5–14. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=24067677.

21. Новиков И.А., Махотин С.С., Сурнина З.В. Вычисление коэффициентов анизотропии и симметричности направленности нервов роговицы на основе автоматизированного распознавания цифровых конфокальных изображений. Медицинская техника. 2015;3(291):23–25. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=24932357.

22. Ang M., Baskaran M., Werkmeister R.M., Chua J., Schmidl D., Aranha Dos Santos V. et al. Anterior segment optical coherence tomography. Prog Retin Eye Res. 2018;(66):132–156. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2018.04.002.

23. Jiao H., Hill L.J., Downie L.E., Chinnery H.R. Anterior segment optical coherence tomography: its application in clinical practice and experimental models of disease. Clin Exp Optom. 2019;102(3):208–217. https://doi.org/10.1111/cxo.12835.

24. Sridhar M.S., Martin R. Anterior segment optical coherence tomography for evaluation of cornea and ocular surface. Indian J Ophthalmol. 2018;66(3):367–372. https://doi.org/10.4103/ijo.ijo_823_17.

25. Аветисов С.Э., Сурнина З.В., Ахмеджанова Л.Т., Георгиев С. Первые результаты клинико-диагностического анализа постковидной периферической невропатии. Вестник офтальмологии. 2021;137(4):58–64. https://doi.org/10.17116/oftalma202113704158.

26. Аветисов С.Э., Сурнина З.В., Новиков И.А., Черненкова Н.А., Тюрина А.А Влияние слезной пленки на результаты прямой оценки чувствительности роговицы. Вестник офтальмологии. 2020;136(2):81–85. https://doi.org/10.17116/oftalma202013602181.

27. Аветисов C.Э., Черненкова Н.А., Сурнина З.В. Анатомо-функциональные особенности и методы исследования нервных волокон роговицы. Вестник офтальмологии. 2018;134(6):102–106. https://doi.org/10.17116/oftalma2018134061102.

28. Аветисов К.С., Юсеф Н.Ю., Сурнина З.В., Аветисов С.Э., Ндари М. Изменения нервных волокон роговицы после микроинвазивной факохирургии (предварительное сообщение). Вестник офтальмологии. 2020;136(2):6–12. https://doi.org/10.17116/oftalma20201360216.

29. Pritchard N., Edwards K., Russell A.W., Perkins B.A., Malik R.A., Efron N. Corneal confocal microscopy predicts 4-year incident peripheral neuropathy in type 1 diabetes. Diabetes Care. 2015;38(4):671–675. https://doi.org/10.2337/dc14-2114.