Сложная задача в педиатрии: сочетание атопического дерматита и витилиго

Атопический дерматит - один из самых распространенных дерматозов во всем мире. Известно, что он часто может сочетаться со множеством аутоиммунных заболеваний. Одной из таких коморбидностей является витилиго. Это сочетание чаще всего встречается именно в детской практике, поскольку для обоих заболеваний характерен ранний дебют. Показано, что раннее начало витилиго и большая площадь поражения кожи связаны с более высокими шансами развития атопического дерматита. Патогенез витилиго характеризуется измененным иммунным ответом, также присутствуют генетические факторы. Показано, что некоторые из этих механизмов являются общими с патогенезом атопического дерматита, но требуется дальнейшее изучение. Считается, что ключевым моментом в развитии витилиго является окислительный стресс, вызывающий разрушение меланоцитов. В связи с этим пациентам с витилиго рекомендуется использование фотозащитных средств. На сегодняшний день изучение влияния видимого света на кожу - весьма актуальный вопрос, в частности, внимание уделяется синему свету (400-500 нм). Исследования демонстрируют, что именно эта длина волны оказывает более выраженное негативное влияние на кожу. Однако научные данные противоречивы, так как излучение этого спектра применяется в терапии различных дерматозов, в т. ч. атопического дерматита. Таким образом, сочетание витилиго и атопического дерматита накладывает определенные ограничения на выбор терапии, средств ухода и фотозащиты. Средство фотопротекции для таких сложных пациентов должно защищать кожу от воздействия как можно более широкого спектра солнечного излучения и при этом не содержать в составе потенциально аллергенных компонентов, способных ухудшить течение атопического дерматита.

1. Tsai T.F., Rajagopalan M., Chu C.Y., Encarnacion L., Gerber R.A., Santos-Estrella P. et al. Burden of atopic dermatitis in Asia. J Dermatol. 2019;46(10):825-834. https://doi.org/10.1111/1346-8138.15048.

2. Eckert L., Gupta S., Gadkari A., Mahajan P., Gelfand J.M. Burden of illness in adults with atopic dermatitis: analysis of National Health and Wellness Survey data from France, Germany, Italy, Spain, and the United Kingdom. J Am Acad Dermatol. 2019;81(1):187-195. https//doi.org/10.1016/j.jaad.2019.03.037.

3. Silverberg J.I., Gelfand J.M., Margolis D.J., Boguniewicz M., Fonacier L., Grayson M.H. et al. Patient burden and quality of life in atopic dermatitis in US adults: a population-based cross-sectional study. Ann Allergy Asthma Immunol. 2018;121(3):340-347. https//doi.org/10.1016/j.anai.2018.07.006.

4. Hay R.J., Johns N.E., Williams H.C., Bolliger I.W., Dellavalle R.P., Margolis D.J. et al. The global burden of skin disease in 2010: an analysis of the prevalence and impact of skin conditions. J Invest Dermatol. 2014;134(6):1527-1534. https://doi.org/10.1038/jid.2013.446.

5. Ezzedine K., Lim H.W., Suzuki T., Katayama I., Hamzavi I., Lan C.C. et al. Revised classification/nomenclature of vitiligo and related issues: the Vitiligo Global Issues Consensus Conference. Pigment Cell Melanoma Res. 2012;25(3):E1-13. https//doi.org/10.1111/j.1755-148X.2012.00997.x

6. Schallreuter K.U., Bahadoran P., Picardo M., Slominski A., Elassiuty Y.E., Kemp E.H. et al. Vitiligo pathogenesis: autoimmune disease, genetic defect, excessive reactive oxygen species, calcium imbalance, or what else? Exp Dermatol. 2008;17(2):139-160. https//doi.org/10.1111/j.1600-0625.2007.00666_1.x.

7. Dell'anna M.L., Picardo M. A review and a new hypothesis for non-immunological pathogenetic mechanisms in vitiligo. Pigment Cell Res. 2006;19(5):406-411. https//doi.org/10.1111/j.1600-0749.2006.00333.x.

8. Rodrigues M., Ezzedine K., Hamzavi I., Pandya A.G., Harris J.E. Vitiligo Working Group. New discoveries in the pathogenesis and classification of vitiligo. J Am Acad Dermatol. 2017;77(1):1-13. https//doi.org/10.1016/j.jaad.2016.10.048.

9. Halder R.M., Grimes P.E., Cowan C.A., Enterline J.A., Chakrabarti S.G., Kenney J.A. Childhood vitiligo. J Am Acad Dermatol. 1987;16(5):948-954. https://doi.org/10.1016/S0190-9622(87)70119-4.

10. Wilke C.M., Bishop K., Fox D., Zou W. Deciphering the role of Th17 cells in human disease. Trends Immunol. 2011;32(12):603-611. https//doi.org/10.1016/j.it.2011.08.003.

11. Koga C., Kabashima K., Shiraishi N., Kobayashi M., Tokura Y. Possible pathogenic role of Th17 cells for atopic dermatitis. J Invest Dermatol. 2008;128(11):2625-2630. https//doi.org/10.1038/jid.2008.111.

12. Paternoster L., Standl M., Waage J., Baurecht H., Hotze M., Strachan D.P. et al. Multi-ancestry genome-wide association study of 21,000 cases and 95,000 controls identifies new risk loci for atopic dermatitis. Nat Genet. 2015;47(12):1449-1456. https//doi.org/10.1038/ng.3424.

13. Mohan G.C., Silverberg J.I. Association of vitiligo and alopecia areata with atopic dermatitis: a systematic review and meta-analysis. JAMA Dermatol. 2015;151(5):522-528. https//doi.org/10.1001/jamadermatol.2014.3324.

14. Acharya P., Mathur M. Association of atopic dermatitis with vitiligo: a systematic review and meta-analysis. J Cosmet Dermatol. 2020;19(8):2016-2020. https://doi.org/10.1111/jocd.13263.

15. Agarwal S., Gupta S., Ojha A., Sinha R. Childhood vitiligo: clinicoepidemiologic profile of 268 children from the Kumaun region of Uttarakhand, India. Pediatr Dermatol. 2013;30(3):348-353. https//doi.org/10.1111/pde.12032.

16. Ezzedine K., Diallo A., Leaute-Labreze C., Seneschal J., Boniface K., Cario-Andre M. et al. Pre- vs. post-pubertal onset of vitiligo: multivariate analysis indicates atopic diathesis association in pre-pubertal onset vitiligo. Br J Dermatol. 2012;167(3):490-495. https//doi.org/10.1111/j.1365-2133.2012.11002.x.

17. Nicolaidou E., Antoniou C., Miniati A., Lagogianni E., Matekovits A., Stratigos A., Katsambas A. Childhood- and later-onset vitiligo have diverse epidemiologic and clinical characteristics. J Am Acad Dermatol. 2012;66(6):954-958. https//doi.org/10.1016/j.jaad.2011.07.010.

18. Silverberg J.I., Silverberg N.B. Association between vitiligo and atopic disorders: a pilot study. JAMA Dermatol. 2013;149(8):983-986. https//doi.org/10.1001/jamadermatol.2013.4228.

19. Martins C., Migayron L., Drullion C., Jacquemin C., Lucchese F., Rambert J. et al. Vitiligo Skin T Cells Are Prone to Produce Type 1 and Type 2 Cytokines to Induce Melanocyte Dysfunction and Epidermal Inflammatory Response Through Jak Signaling. J Invest Dermatol. 2022;142(4):1194-1205. https://doi.org/10.1016/j.jid.2021.09.015.

20. Imran M., Laddha N.C., Dwivedi M., Mansuri M.S., Singh J., Rani R. et al. Interleukin-4 genetic variants correlate with its transcript and protein levels in patients with vitiligo. Br J Dermatol. 2012;167(2):314-323. https://doi.org/10.1111/j.1365-2133.2012.11000.x.

21. Cheong K.A., Chae S.C., Kim Y.S., Kwon H.B., Chung H.T., Lee A.Y. Association of thymic stromal lymphopoietin gene-847C>T polymorphism in generalized vitiligo. Exp Dermatol. 2009;18(12):1073-1075. https//doi.org/10.1111/j.1600-0625.2009.00897.x.

22. Birlea S.A., Jin Y., Bennett D.C., Herbstman D.M., Wallace M.R., McCormack W.T. et al. Comprehensive association analysis of candidate genes for generalized vitiligo supports XBP1, FOXP3, and TSLP. J Invest Dermatol. 2011;131(2):371-381. https://doi.org/10.1038/jid.2010.337.

23. Vaccaro M., Cicero F., Mannucci C., Calapai G., Spatari G., Barbuzza O. et al. IL-33 circulating serum levels are increased in patients with non-segmental generalized vitiligo. Arch Dermatol Res. 2016;308(7):527-530. https://doi.org/10.1007/s00403-016-1675-2.

24. Dell'Anna M.L., Maresca V., Briganti S., Camera E., Falchi M., Picardo M. Mitochondrial impairment in peripheral blood mononuclear cells during the active phase of vitiligo. J Invest Dermatol. 2001;117(4):908-913. https://doi.org/10.1046/j.0022-202x.2001.01459.x.

25. Maresca V., Roccella M., Roccella F., Camera E., Del Porto G., Passi S. et al. Increased sensitivity to peroxidative agents as a possible pathogenic factor of melanocyte damage in vitiligo. J Invest Dermatol. 1997;109(3):310-313. https://doi.org/10.1111/1523-1747.ep12335801.

26. Jimbow K., Chen H., Park J.S., Thomas P.D. Increased sensitivity of melanocytes to oxidative stress and abnormal expression of tyrosinase-related protein in vitiligo. Br J Dermatol. 2001;144(1):55-65. https://doi.org/10.1046/j.1365-2133.2001.03952.x.

27. Speeckaert R., Dugardin J., Lambert J., Lapeere H., Verhaeghe E., Speeckaert M.M. et al. Critical appraisal of the oxidative stress pathway in vitiligo: a systematic review and meta-analysis. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2018;32(7):1089-1098. https://doi.org/10.1111/jdv.14792.

28. Gawkrodger D.J., Ormerod A.D., Shaw L., Mauri-Sole I., Whitton M.E., Watts M.J. et al. Guideline for the diagnosis and management of vitiligo. Br J Dermatol. 2008;159(5):1051-1076. https://doi.org/10.1111/j.1365-2133.2008.08881.x.

29. Teulings H.E., Overkamp M., Ceylan E., Nieuweboer-Krobotova L., Bos J.D., Nijsten T. et al. Decreased risk of melanoma and nonmelanoma skin cancer in patients with vitiligo: a survey among 1307 patients and their partners. Br J Dermatol. 2013;168(1):162-171. https://doi.org/10.1111/bjd.12111.

30. Baykal Selpuk L., Katkat E., Aksu Arica D., Yayli S., Bahadir S. Sun-protection habits and knowledge of patients with vitiligo. Acta Dermatovenerol Alp Pannonica Adriat. 2020;29(1):7-10. https://doi.org/10.1111/jdv.15264.

31. Ash C., Dubec M., Donne K., Bashford T. Effect of wavelength and beamwidth on penetration in light-tissue interaction using computational methods. Lasers Med Sci. 2017;32(8):1909-1918. https://doi.org/10.1007/s10103-017-2317-4.

32. Schutz R. Blue light and the skin. Curr Probl Dermatol. 2021;55:354-373. https://doi.org/10.1159/000517644.

33. Mahmoud B.H., Hexsel C.L., Hamzavi I.H., Lim H.W. Effects of visible light on the skin. Photochem Photobiol. 2008;84(2):450-462. https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.2007.00286.x.

34. Narla S., Kohli I., Hamzavi I.H., Lim H.W. Visible light in photodermatology. Photochem Photobiol Sci. 2020;19(1):99-104. https://doi.org/10.1039/c9pp00425d.

35. Campiche R., Curpen S.J., Lutchmanen-Kolanthan V., Gougeon S., Cherel M., Laurent G. et al. Pigmentationeffects of blue light irradiation on skin and how to protect against them. Int J Cosmet Sci. 2020;42(4):399-406. https://doi.org/10.1111/ics.12637.

36. Fatima S., Braunberger T., Mohammad T.F., Kohli I., Hamzavi I.H. The role of sunscreen in melasma and postinflammatory hyperpigmentation. Indian J Dermatol. 2020;65(1):5-10. https://doi.org/10.4103/ijd.IJD_295_18.

37. Sklar L.R., Almutawa F., Lim H.W., Hamzavi I. Effects of ultraviolet radiation, visible light, and infrared radiation on erythema and pigmentation: a review. Photochem Photobiol Sci. 2013;12(1):54-64. https://doi.org/10.1039/c2pp25152c.

38. Chiarelli-Neto O., Ferreira A.S., Martins W.K., Pavani C., Severino D., Faiao-Flores F. et al. Melanin photosensitization and the effect of visible light on epithelial cells. PLoS ONE. 2014;9(11):e113266. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0113266.

39. Liebmann J., Born M., Kolb-Bachofen V. Blue-light irradiation regulates proliferation and differentiation in human skin cells. J Invest Dermatol. 2010;130(1):259-269. https://doi.org/10.1038/jid.2009.194.

40. Garza Z.C.F., Born M., Hilbers P.A.J., van Riel N.A.W., Liebmann J. Visible Blue Light Therapy: Molecular Mechanisms and Therapeutic Opportunities. Curr Med Chem. 2018;25(40):5564-5577. https://doi.org/10.2174/0929867324666170727112206.

41. Krassovka J.M., Suschek C.V., Prost M., Grotheer V., Schiefer J.L., Demir E. et al. The impact of non-toxic blue light (453 nm) on cellular antioxidative capacity, TGF-beta1 signaling, and myofibrogenesis of human skin fibroblasts. J Photochem Photobiol B. 2020;209:111952. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2020.111952.

42. Bacqueville D., Jacques-Jamin C., Lapalud P., Douki T., Roullet N., Sereno J. et al. Formulation of a new broad-spectrum UVB + UVA and blue light SPF50+ sunscreen containing Phenylene Bis-Diphenyltriazine (TriAsorB), an innovative sun filter with unique optical properties. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2022;36(6):29-37. https://doi.org/10.1111/jdv.18196.