Анализ экспрессии генов и гистологических изменений кожи до и после монополярного микроигольчатого RF-лифтинга Exion

Введение. Монополярный микроигольчатый RF-лифтинг представляет собой контролируемое термомеханическое повреждение ткани, которое может инициировать каскад репаративных реакций, включающих ранние воспалительные сигналы, активацию клеток дермы и последующее ремоделирование внеклеточного матрикса.

Цель. Провести исследование экспрессии генов и гистологических изменений кожи до и после монополярного микроигольчатого RF-лифтинга (Exion, BTL Industries Ltd., Великобритания).

Материалы и методы. В исследовании приняли участие три пациента. Для анализа были отобраны образцы кожи, полученные методом панч-биопсии, в области живота диаметром 4 мм после проведения процедуры монополярного микроигольчатого RF-лифтинга (Exion, BTL Industries Ltd.). Для первого пациента был использован изолированный тип игл с расширенным режимом. Для второго пациента был неизолированный тип игл без расширенного режима. Для третьего пациента был изолированный тип игл без расширенного режима.

Результаты. Наиболее воспроизводимым морфологическим результатом стало увеличение толщины жизнеспособного эпидермиса у всех трех пациентов. Этот факт позволяет предположить, что эпидермис является одним из основных компартментов, реагирующих на микроигольчатое RF-воздействие. Также у всех трех пациентов к 40-му дню отмечался процесс ремоделирования дермы. Особого внимания заслуживают данные RT-qPCR. Увеличение экспрессии COL1A1 было отмечено у всех трех пациентов, а повышение COL3A1 – у двух из трех.

Выводы. Полученные результаты поддерживают концепцию запуска репаративно-ремоделирующего ответа после монополярного микроигольчатого RF-воздействия, но требуют подтверждения в более масштабных и методологически стандартизированных исследованиях.

1. Vandesompele J, De Preter K, Pattyn F, Poppe B, Van Roy N, De Paepe A, Speleman F. Accurate normalization of real-time quantitative RT-PCR data by geometric averaging of multiple internal control genes. Genome Biol. 2002;3(7):research0034.1. https://doi.org/10.1186/gb-2002-3-7-research0034.

2. Gupta J, Park SS, Bondy B, Felner EI, Prausnitz MR. Infusion pressure and pain during microneedle injection into skin of human subjects. Biomaterials. 2011;32(28):6823–6831. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2011.05.061.

3. Tanaka Y. Nonsurgical facial tightening after a fractional noninsulated microneedling radiofrequency treatment in Asians. Dermatol Rev. 2020;(1):20–26. https://doi.org/10.1002/der2.7.

4. Chen C, Jhuang J. Case Report: Histological Evaluation of Deep Tissue Remodeling After Extended Mode of Fractional RF Microneedling. Arch Clin Med Case Rep. 2025;9(4):175–180. https://doi.org/10.26502/acmcr.96550729.

5. Caetano GF, Fronza M, Leite MN, Gomes A, Frade MA. Comparison of collagen content in skin wounds evaluated by biochemical assay and by computeraided histomorphometric analysis. Pharm Biol. 2016;54(11):2555–2559. https://doi.org/10.3109/13880209.2016.1170861.

6. Gallucci RM, Lee EG, Tomasek JJ. IL-6 modulates alpha-smooth muscle actin expression in dermal fibroblasts from IL-6-deficient mice. J Invest Dermatol. 2006;126(3):561–568. https://doi.org/10.1038/sj.jid.5700109.

7. Li Y, Zhao J, Yin Y, Li K, Zhang C, Zheng Y. The Role of IL-6 in Fibrotic Diseases: Molecular and Cellular Mechanisms. Int J Biol Sci. 2022;18(14):5405–5414. https://doi.org/10.7150/ijbs.75876.

8. Burgoyne RD, Morgan A. Secretory granule exocytosis. Physiol Rev. 2003;83(2):581–632. https://doi.org/10.1152/physrev.00031.2002.

9. Saitow CB, Wise SG, Weiss AS, Castellot JJ, Kaplan DL. Elastin biology and tissue engineering with adult cells. Biomol Concepts. 2013;4(2):173–185. https://doi.org/10.1515/bmc-2012-0040.

10. Wang F, Do TT, Smith N, Orringer JS, Kang S, Voorhees JJ, Fisher GJ. Implications for cumulative and prolonged clinical improvement induced by cross-linked hyaluronic acid: An in vivo biochemical/microscopic study in humans. Exp Dermatol. 2024;33(1):e14998. https://doi.org/10.1111/exd.14998.

11. Wang K, Meng X, Guo Z. Elastin Structure, Synthesis, Regulatory Mechanism and Relationship With Cardiovascular Diseases. Front Cell Dev Biol. 2021;9:596702. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.596702.

12. Борзых ОБ, Шнайдер НА, Петрова ММ, Карпова ЕИ, Демина ОМ, Затолокина МА. Регуляция обмена эластина в коже: биологические и генетические аспекты. Клиническая дерматология и венерология. 2022;21(4):435 441. https://doi.org/10.17116/klinderma202221041435.

13. Ткачук ЕА, Семинский ИЖ. Наследственные нарушения синтеза и структуры эластиновых волокон. Байкальский медицинский журнал. 2025;4(4):19–30. https://doi.org/10.57256/2949-0715-2025-4-4-19-30.

14. Потекаев НН, Борзых ОБ, Шнайдер НА, Петрова ММ, Карпова ЕИ, Демина ОМ и др. Геномика синтеза эластических волокон. Практическая значимость для врачей-косметологов и дерматологов. Клиническая дерматология и венерология. 2021;20(6):52–59. https://doi.org/10.17116/klinderma20212006152.

15. Baumann L, Bernstein EF, Weiss AS, Bates D, Humphrey S, Silberberg M, Daniels R. Clinical Relevance of Elastin in the Structure and Function of Skin. Aesthet Surg J Open Forum. 2021;3(3):ojab019. https://doi.org/10.1093/asjof/ojab019.

16. Widgerow AD, Napekoski K. New approaches to skin photodamage histology-Differentiating ‘good’ versus ‘bad’ Elastin. J Cosmet Dermatol. 2021;20(2):526–531.

17. Meyer PF, de Oliveira P, Silva FKBA, da Costa ACS, Pereira CRA, Casenave S et al. Radiofrequency treatment induces fibroblast growth factor 2 expression and subsequently promotes neocollagenesis and neoangiogenesis in the skin tissue. Lasers Med Sci. 2017;32(8):1727–1736. https://doi.org/10.1007/s10103-017-2238-2.

18. Моржанаева МА, Свечникова ЕВ, Бабин ЮЮ, Старкина ОВ. Исследование пролиферативной активности и экспрессии генов (col1a1, mmp1a, mmp1b, mmp3, vcan, eln) в фибробластах после воздействия препаратов коллагена. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2024;(3):102–112. https://doi.org/10.14427/jipai.2024.3.102.

19. Dierckx S, Patrizi M, Merino M, González S, Mullor JL, Nergiz-Unal R. Collagen peptides affect collagen synthesis and the expression of collagen, elastin, and versican genes in cultured human dermal fibroblasts. Front Med. 2024;11:1397517. https://doi.org/10.3389/fmed.2024.1397517.

20. Моржанаева МА, Свечникова ЕВ. Метод восстановления внеклеточного матрикса с помощью заместительной коллагенотерапии препаратом Linerase. Фарматека. 2024;31(5):92–101. https://doi.org/10.18565/pharmateca.2024.5.92-101.