Адекватный мукоцилиарный клиренс как фактор профилактики и борьбы с гнойно-воспалительной патологией лор-органов

Гнойно-воспалительные заболевания верхних дыхательных путей (ВДП) и ЛОР-органов являются актуальной проблемой современной клинической медицины. Высокая распространенность данной патологии обусловлена активным воздействием патогенной микрофлоры на слизистую оболочку респираторного тракта, возрастающей ролью условно патогенных и атипичных микроорганизмов в генезе инфекции ЛОР-органов, а также нарушениями в работе мукоцилиарного клиренса. Ограничения подвижности ресничек мерцательных клеток, а также их частичное или полное отсутствие, изменение состава слизистого секрета и замедление скорости движения слизи являются теми механизмами, которые определяют возможность возникновения очага острого воспаления на слизистой оболочке ВДП, а также увеличивают риск развития хронических воспалительных заболеваний ЛОР-органов. Накопленные данные об особенностях существования микробных биоценозов в организме человека, а также неуклонный повсеместный рост проблемы антибиотикорезистентности диктуют необходимость поиска новых решений в лечении гнойно-воспалительной патологии ЛОР-органов. Хорошо зарекомендовавшим себя принципом терапии таких состояний является топическое применение комбинированных лекарственных препаратов, сочетающих в своем составе муколитический и антибактериальные компоненты, активно воздействующие на основные звенья патогенеза острого и хронического воспаления ВДП. Данные задачи наиболее эффективно решает комбинированный препарат, в составе которого муколитик N-ацетилцистеин потенциирует действие другого компонента – антибиотика тиамфеникола. В пользу выбора данного препарата в качестве монотерапии или комбинированной терапии гнойно-воспалительных заболеваний ЛОР-органов говорит удобная форма выпуска для аэрозольного введения.

1. Braiman A., Priel Z. Efficient mucociliary transport relies on efficient regulation of ciliary beating. Respir Physiol Neurobiol. 2008;163(1–3):202–207. doi: 10.1016/j.resp.2008.05.010.

2. Bustamante-Marin X.M., Ostrowski L.E. Cilia and Mucociliary Clearance. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2017;9(4):a028241. doi: 10.1101/cshperspect.a028241.

3. Bertrand B., Collet S., Eloy P., Rombaux P. Secondary ciliary dyskinesia in upper respiratory tract. Acta Otorhinolaryngol Belg. 2000;54(3):309–316. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11082767.

4. Munkholm M., Mortensen J. Mucociliary clearance: pathophysiological aspects. Clin Physiol Funct Imaging. 2014;34(3):171–177. doi: 10.1111/cpf.12085.

5. Лопатин А.С. Ринит. М.: Литтерра; 2010. 424 с. Режим доступа: https://rosmedlib.ru/book/ISBN9785904090302.html.

6. Demarco R.C., Tamashiro E., Rossato M., Ferreira M.D., Valera F.C., AnselmoLima W.T. Ciliary ultrastructure in patients with chronic rhinosinusitis and primary ciliary dyskinesia. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2013;270(7):2065– 2070. doi: 10.1007/s00405-012-2342-7.

7. Chilvers M.A., Rutman A., O’Callaghan C. Functional analysis of cilia and ciliated epithelial ultrastructure in healthy children and young adults. Thorax. 2003;58(4):333–338. doi: 10.1136/thorax.58.4.333.

8. Rutland J., Griffin W.M., Cole P.J. Human ciliary beat frequency in epithelium from intrathoracic and extrathoracic airways. Am Rev Respir Dis. 1982;125(1):100–105. doi: 10.1164/arrd.1982.125.1.100.

9. Yager J., Chen T. M., Dulfano M. J. Measurement of frequency of ciliary beats of human respiratory epithelium. Chest. 1978;73(5):627–633. doi: 10.1378/chest.73.5.627.

10. Tamalet A., Clement A., Roudot-Thoraval F., Desmarquest P., Roger G., Boulé M., et al. Abnormal Central Complex Is a Marker of Severity in the Presence of Partial Ciliary Defect. Pediatrics. 2001;108(5):e86. doi: 10.1542/peds.108.5.e86.

11. Mall M.A. Role of cilia, mucus, and airway surface liquid in mucociliary dysfunction: lessons from mouse models. J Aerosol Med Pulm Drug Deliv. 2008;21(1):13–24. doi: 10.1089/jamp.2007.0659.

12. Пальчун В.Т., Кафарская Л.И., Кунельская Н.Л., Артемьев М.Е., Гуров А.В. Микробный пейзаж и пути рациональной антибиотикотерапии при острой гнойно-воспалительной патологии ЛОР-органов. Лечебное дело. 2004;(4):88–95. Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/mikrobnyy-peyzazh-i-puti-ratsionalnoy-antibiotikoterapii-pri-ostroy-gnoyno-vospalitelnoy-patologii-lor-organov.

13. Гуров А.В., Юшкина М.А. Особенности микробного пейзажа и проблемы антибактериальной терапии воспалительных заболеваний ЛОР-органов у больных сахарным диабетом. Вестник оториноларингологии. 2018;83(1):59–61. doi: 10.17116/otorino201883159-61.

14. Dlugaszewska J., Leszczynska M., Lenkowski M., Tatarska A., Pastusiak T., Szyfter W. The pathophysiological role of bacterial biofilms in chronic sinusitis. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2016;273(8):1989–1994. doi: 10.1007/s00405-015-3650-5.

15. Magana M., Sereti C., Ioannidis A., Mitchell C.A., Ball A.R., Magiorkinis E. et al. Options and Limitations in Clinical Investigation of Bacterial Biofilms. Clin Microbiol Rev. 2018;31(3):e00084–16. doi: 10.1128/CMR.00084-16.

16. Pérez-Giraldo C., Rodríguez-Benito A., Morán F.J., Hurtado C., Blanco M.T., Gómez-García A.C. Influence of N-acetylcysteine on the formation of biofilm by Staphylococcus epidermidis. J Antimicrob Chemother. 1997;39(5):643–646. doi: 10.1093/jac/39.5.643.

17. Olofsson A.C., Hermansson M., Elwing H. N-acetyl-L-cysteine affects growth, extracellular polysaccharide production, and bacterial biofilm formation on solid surfaces. Appl Environ Microbiol. 2003;69(8):4814–4822. doi: 10.1128/aem.69.8.4814-4822.2003.

18. Zhao T., Liu Y. N-acetylcysteine inhibit biofilms produced by Pseudomonas aeruginosa. BMC Microbiol. 2010;10:140. doi: 10.1186/1471-2180-10-140.

19. Dinicola S., De Grazia S., Carlomagno G., Pintucci J.P. N-acetylcysteine as powerful molecule to destroy bacterial biofilms. A systematic review. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2014;18(19):2942–2948. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25339490.

20. Blasi F., Page C., Rossolini G.M., Pallecchi L., Matera M.G., Rogliani P., Cazzola M. The effect of N-acetylcysteine on biofilms: Implications for the treatment of respiratory tract infections. Respir Med. 2016;117:190–197. doi: 10.1016/j.rmed.2016.06.015.

21. Loscialpo Ramundo D. On the use of the association of acetylcysteine and thiamphenicol glycinate in some pediatric pulmonary diseases. Clin Pediatr (Bologna). 1968;50(2):43–56. (In Italian) Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/5737082.

22. Macchi A., Ardito F., Marchese A., Schito G.C., Fadda G. Efficacy of N-AcetylCysteine in Combination with Thiamphenicol in Sequential (Intramuscular/Aerosol) Therapy of Upper Respiratory Tract Infections Even When Sustained by Bacterial Biofilms. J Chemotherapy. 2006;18(5):507–513. doi: 10.1179/joc.2006.18.5.507.

23. Mayaud C., Lentschner C., Bouchoucha S., Marsac J. Thiamphenicol glycinate acetylcysteinate in the treatment of acute respiratory infections with mucostasis. J Eur Respir Dis. 1980;111:70–73. (In French) Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/6938412.

24. Macchi A., Castelnuovo P. Aerosol antibiotic therapy in children with chronic upper airway infections: a potential alternative to surgery. Int J Immunopathol Pharmacol. 2009;22(2):303–310. doi: 10.1177/039463200902200207.

25. Tullio V., Cuffini A., Mandras N., Roana J., Banche G., Ungheri D., Carlone N. Influence of thiamphenicol on the primary functions of human polymorphonuclear leucocytes against Streptococcus pyogenes. Int J Antimicrob Agents. 2004;24(4):381–385. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2004.03.027.

26. Snow V., Mottur-Pilson C., Gonzales R. Principles of appropriate antibiotic use for treatment of nonspecific upper respiratory tract infections in adults. Ann Intern Med. 2001;134(6):487–489. doi: 10.7326/0003-4819-134-6-200103200-00014.