Preview

Медицинский Совет

Расширенный поиск

Пробиотики при респираторных заболеваниях: есть ли пути взаимодействия и перспективы применения?

https://doi.org/10.21518/2079-701X-2019-2-173-182

Полный текст:

Аннотация

На сегодняшний день достаточно подробно изучен состав микробиома желудочно-кишечного тракта. Появляется все больше исследований о наличии в респираторном тракте, как в верхних, так и нижних дыхательных путях, своего собственного микробиома. В статье представлены основные известные на сегодняшний день сведения о видовом разнообразии микроорганизмов, присутствующих в респираторном и желудочно-кишечном трактах, описана роль здорового микробиома в обеспечении местного и общего иммунитета. Описана роль пробиотических штаммов микроорганизмов и их влияние на различные звенья иммунного ответа. Представлены данные исследований по изучению влияния пробиотических препаратов на обеспечение иммунологической резистентности организма человека, особенно респираторного тракта при высокой вирусной нагрузке. Восстановление нормального микробиома в организме человека с использованием пробиотических препаратов, вводимых через ЖКТ, способно снизить риски развития респираторных инфекционных заболеваний и тяжесть их проявления.

Об авторах

И. Н. Захарова
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Захарова Ирина Николаевна – заслуженный врач РФ, доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой педиатрии с курсом поликлинической педиатрии им. Г.Н. Сперанского

125993, г. Москва, ул. Баррикадная, д. 2/1, стр. 1



И. В. Бережная
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Бережная Ирина Владимировна – кандидат медицинских наук, доцент кафедры с курсом поликлинической педиатрии имени академика Г.Н. Сперанского

125993, г. Москва, ул. Баррикадная, д. 2/1, стр. 1



Л. Я. Климов
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Ставропольский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Климов Леонид Яковлевич – кандидат медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой педиатрии

355017, Ставропольский край, г. Ставрополь, ул. Мира, д. 310



А. Н. Касьянова
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Касьянова Анна Николаевна – клинический ординатор кафедры педиатрии с курсом поликлинической педиатрии имени академика Г.Н. Сперанского

125993, г. Москва, ул. Баррикадная, д. 2/1, стр. 1



О. В. Дедикова
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Дедикова Ольга Валерьевна – клинический ординатор кафедры педиатрии с курсом поликлинической педиатрии имени академика Г.Н. Сперанского

125993, г. Москва, ул. Баррикадная, д. 2/1, стр. 1



К. А. Кольцов
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Кольцов Константин Анатольевич – соискатель кафедры педиатрии с курсом поликлинической педиатрии им. Г.Н. Сперанского

125993, г. Москва, ул. Баррикадная, д. 2/1, стр. 1



Список литературы

1. Постановление главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 25.06.2018 №38 «О мероприятиях по профилактике гриппа и острых респираторных вирусных инфекций в эпидемическом сезоне 2018– 2019 годов».

2. http://rospotrebnadzor.ru/activities/statisticalmaterials.

3. WHO, UNICEF, World Bank. State of the World’s Vaccines and Immunization, 3rd ed Geneva, World Health Organization, 2009.

4. WHO: http://www.who.int/immunization/newsroom/en.

5. WHO: http://www.euro.who.int/vaccine/eiw.

6. WHO: http://www.euro.who.int/vaccine/safe.

7. Инфекционная заболеваемость в Российской Федерации за январь-октябрь 2018 года: http://rospotrebnadzor.ru/activities/statisticalmaterials/statictic_details.php?ELEMENT_ID=10897.

8. Медуницын Н.В., Олефир Ю.В., Меркулов В.А., Бондарев В.П. Персональный и коллективный иммунитет при вакцинации. Биопрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2016;16;4(60):195-207.

9. Инфекционная заболеваемость в Российской Федерации за январь-декабрь 2016 года: http:// rospotrebnadzor.ru/activities/statistical-materials/statictic_details.php?ELEMENT_ID=7804.

10. Шамшева О.В. Вакцинация и здоровье человека. Детские инфекции. 2015;14(4):6-12.

11. Samuelson D.R., Welsh D.A., and Shellito J.E. Regulation of lung immunity and host defense by the intestinal microbiota. Front Microbiol. 2015;6:1085.

12. Forsythe P. Probiotics and lung diseases. Chest J. 2011;139:901–908. 10.1378/chest.10-1861.

13. Forsythe P. Probiotics and lung immune responses. Ann. Am. Thorac. Soc. 2014;11:S33–S37.

14. Weizman Z., Asli G., Alsheikh A. Effect of a probiotic infant formula on infections in child care centers: comparison of two probiotic agents. Pediatrics. 2005;115(1):5–9.

15. Reportof a Joint FAO/WHO Working group. Guidelines for evaluation of probiotics in food. 2002, London, Ontario, Canada: FAO/WHO.

16. Scaldaferri F., Pizzoferrato M., Gerardi V., Lopetuso L., Gasbarrini A. The gut barrier: new acquisitions and therapeutic approaches. J Clin Gastroenterol. 2012 Oct;46(Suppl):S12-7.

17. Cornick S., Tawiah A., Chadee K. Roles and regulation of the mucus barrier in the gut. Tissue Barriers. 2015 Apr 3;3(1-2):e982426. doi: 10.4161/21688370.2014.982426. e Collection 2015.

18. Boltin D., Perets T.T., Vilkin A., Niv Y. Mucin function in inflammatory bowel disease, an update. J Clin Gastroenterol. 2013;47:106-11.

19. Bergstrom K.S.B., Kissoon-Singh V., Gibson D.L., Ma C., Montero M., Sham H.P., Ryz N., Huang T., Velcich A., Finlay B.B., et al. Muc2 protects against lethal infectious colitis by disassociating pathogenic and commensal bacteria from the colonic mucosa. PLoS Pathog. 2010; 6:e1000902.

20. Maldonado-Contreras A.L., McCormick B.A. Intestinal epithelial cells and their role in innate mucosal immunity. Cell Tissue Res. 2011 Jan;343(1):5-12. doi: 10.1007/s00441-0101082-5.

21. Deretic V. Autophagy in immunity and cellautonomous defense against intracellular microbes. Immunol. Rev. 2011;240:92–104.

22. Pasupuleti M., Schmidtchen A., Malmsten M. Antimicrobial peptides: key components of the innate immune system. Crit. Rev. Biotechnol. 2012;32(2):143–171.

23. Vandamme D., Landuyt B., Luyten W., Schoofs L. A comprehensive summary of LL-37, the factotum human cathelicidin peptide. Cell Immunol. 2012;280:22–35.

24. Mathew B., Nagaraj R. Variations in the interaction of human defensins with Escherichia coli: Possible implications in bacterial killing. PLoS One. 2017;12(4):e0175858.

25. Patro S., Maiti S., Panda S.K., Dey N. Utilization of plant-derived recombinant human β-defensins (hBD-1 and hBD-2) for averting salmonellosis. Transgenic Res. 2015;24(2):353–364.

26. Woo J.I., Kil S.H., Brough D.E., Lee Y.J., Lim D.J., Moon S.K. Therapeutic potential of adenovirusmediated delivery of β-defensin 2 for experimental otitis media. Innate Immun. 2015;21(2):215–224.

27. Lee H.Y., Andalibi A., Webster P., Moon S.K., Teufert K., Kang S.H., Li J.D., Nagura M., Ganz T., Lim D.J. Antimicrobial activity of innate immune molecules against Streptococcus pneumoniae, Moraxella catarrhalis and non typeable Haemophilus influenzae. BMC Infect Dis. 2004;4:12.

28. Tenge V.R., Gounder, A.P., Wiens, M.E., Lu, W. and Smith, J.G. Delineation of interfaces on human alpha-defensins critical for human adenovirus and human papillomavirus inhibition. PLoS Pathog. 2014;10(9):e1004360.

29. Saitoh T., Komano J., Saitoh Y., Misawa T., Takahama M., Kozaki T., Uehata T., Iwasaki H., Omori H., Yamaoka S., Yamamoto N., Akira S. Neutrophil extracellular traps mediate a host defense response to human immunodeficiency virus-1. Cell Host Microbe. 2012;12(1):109–116.

30. Salvatore M., Garcia-Sastre A., Ruchala P., Lehrer R. I., Chang T., Klotman M.E. Alphadefensin inhibits influenza virus replication by cell-mediated mechanism(s). J. Infect. Dis. 2007;196(6):835–843.

31. Crack L.R., Jones L., Malavige G.N., Patel V., Ogg G.S. Human antimicrobial peptides LL-37 and human beta-defensin-2reduce viral replication in keratinocytes infected with Varicella zoster virus. Clin. Exp. Dermatol. 2012;37(5):534–543.

32. Swidergall M., Ernst J.F. Interplay between Candida albicans and the antimicrobial peptide armory. Eukaryot Cell. 2014;13(8):950–957.

33. Barlow P.G., Svoboda P., Mackellar A., Nash A.A., York I.A., Pohl J., Davidson D.J., Donis R.O. Antiviral activity and increased host defense against influenza infection elicited by the human cathelicidin LL-37. PLoS One. 2011;6(10):e25333. doi: 10.1371/journal.pone.0025333. Epub 2011 Oct 21.

34. Gordon Y.J., Huang L.C., Romanowski E.G., Yates K.A., Proske R.J., McDermott A.M. Human cathelicidin (LL-37), a multifunctional peptide, is expressed by ocular surface epithelia and has potent antibacterial and antiviral activity. Curr Eye Res. 2005 May;30(5):385-94.

35. Currie S.M., Findlay E.G., McHugh B.J., Mackellar A., Man T., Macmillan D., Wang H., Fitch P.M., Schwarze J., Davidson D.J. The human cathelicidin LL-37 has antiviral activity against respiratory syncytial virus. PLoS One. 2013 Aug 30;8(8):e73659. doi: 10.1371/journal.pone.0073659. e Collection 2013.

36. Bals R., Wang X., Zasloff M., Wilson J.M. The peptide antibiotic LL-37/hCAP-18 is expressed in epithelia of the human lung where it has broad antimicrobial activity at the airway surface. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998 Aug 4;95(16):9541-6.

37. Mc Glasson S.L., Semple F., Mac Pherson H., Gray M., Davidson D.J., Dorin J.R. Human β-defensin 3 increases the TLR9-dependent response to bacterial DNA. Eur J Immunol. 2017;47(4):658-664. doi: 10.1002/eji.201646799.

38. Yang D., Biragyn A., Kwak L.W., Oppenheim J.J. Mammalian defensins in immunity: more than just microbicidal. Trends Immunol. 2002;23(6):291–296.

39. Tjabringa G.S., Ninaber D.K., Drijfhout J.W., Rabe K.F., Hiemstra P.S. Human cathelicidin LL-37 is a chemoattractant for eosinophils and neutrophils that acts via formyl-peptide receptors. Int. Arch. Allergy Immunol. 2006;140:103–112.

40. Agier J., Brzezinska-Blaszczyk E. Cathelicidins and defensins regulate mast cell antimicrobial activity. Postepy Hig Med Dosw (Online). 2016;70:618–636.

41. Pound L.D., Patrick C., Eberhard C.E., Mottawea W., Wang G.S., Abujamel T., et al. 720 Cathelicidin antimicrobial peptide: a novel regulator of islet function, islet 721 regeneration and selected gut bacteria. Diabetes. 2015.

42. Lievin-Le Moal V., Servin A.L. The front line of enteric host defense against unwelcome intrusion of harmful microorganisms: mucins, antimicrobial peptides, and microbiota. Clin. Microbiol. Rev. 2006;19:315–337. http://dx.doi.org/10.1128/CMR.19.2.315-337.2006.

43. Lee D.K., Im J.G., Lee K.S., Lee J.S., Seo J.B., Goo J.M., et al. B-cell lymphoma of bronchus-associated lymphoidtissue (BALT): CT features in 10 patients. J Comput Assist Tomogr. 2000;24:30-4.

44. McCulloch G.L., Sinnatamby R., Stewart S., Goddard M., Flower C.D.R. High-resolution computed tomographic appearance of MALToma of the lung. Eur Radiol. 1998;8:1669-73.

45. Dickson R.P., Erb-Downward J.R., Freeman C.M., McCloskey L., Beck J.M., Huffnagle G.B., et al. Spatial variation in the healthy human lung microbiome and the adapted island model of lung biogeography. Ann Am Thorac Soc. 2015;12:821–830.

46. Bassis C.M., Erb-Downward J.R., Dickson R.P., Freeman C.M., Schmidt T.M., Young V.B., et al. Analysis of the upper respiratory tract microbiotas as the source of the lung and gastric microbiotas in healthy individuals. mBio. 2015;6:e00037.

47. Thomas-White K.J., Hilt E.E., Fok C., et al. Incontinence medication response relates to the female urinary microbiota. Int Urogynecol J. 2016;27:723–30.

48. Hilt E.E., McKinley K., Pearce M.M., et al. Urine is not sterile: use of enhanced urine culture techniques to detect resident bacterial flora in the adult female bladder. J Clin Microbiol. 2014;52:871–6.

49. Madan J.C., Koestler D.C., Stanton B.A., et al. Serial analysis the gut and respiratory microbiome in cystic fibrosis in infancy: interaction between intestinal and respiratory tracts and impact of nutritional exposures. M Bio. 2012 Aug 21;3(4). pii: e00251-12. doi: 10.1128/mBio.00251-12. Print 2012.

50. Southam D.S., Dolovich M., O’Byrne P.M., Inman M.D. Distribution of intranasal instillation sin mice: effects of volume, time, body position, and anesthesia. Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol. 2002;282:L833–L839. 10.1152/ajplung.00173.2001.

51. Sanders M.E. New York Academy of Sciences, “Science & The City” podcast about probiotics. Free podcast (“More Than A Yogurt Cup”) available at NYAS website and on iTunes (search “Science & The City”), 2010.

52. Makino S., Ikegami S., Kume A., Horiuchi H., Sasaki H., Orii N. Reducing the risk of infection in the elderly by dietary intake of yoghurt fermented with Lactobacillus delbrueckiissp. bulgaricusOLL1073R-1. British Journal of Nutrition. 2010;104:998–1006.

53. Mortaz E., Adcock I.M., Folkerts G., Barnes P.J., VosA.P., Garssen J. Probiotics in the Management of Lung Diseases. Mediators of Inflammation. 2013; Article ID 751068, 10 pages. http://dx.doi.org/10.1155/2013/751068.

54. Szajewska H., Skorka A., Ruszczynski M. et al. Meta analysis: Lactobacillus GG for treating acute diarrhea in children. Aliment. Pharmacol. Ther. 2007;25:871–881.

55. Conway P.L., Gorbach S.L., Goldin B.R. Survival of lactic acid bacteria in the human stomach and adhesion to intestinal cells. J Dairy Sci. 1987;70(1):1–12.

56. Juntunen M., Kirjavainen P.V., Ouwehand A.C., Salminen S.J., Isolauri E. Adherence of probiotic bacteria to human intestinal mucus in healthy infant sand during rotavirus infection. Clin Diagn Lab Immunol. 2001;8:293-296.

57. Claes I.J., Schoofs G., Regulski Ketal. Genetic and Biochemical Characterization of the Cell Wall Hydrolase Activity of the Major Secreted Protein of Lactobacillus rhamnosus GG. PLoS One. 2012;7:e31588.

58. Miettinen M., Matikainen S., Vuopio-Varkila J., Pirhonen J., Varkila K., Kurimoto M., et al. Lactobacilli and streptococci induce interleukin-12 (IL-12), IL-18, and gamma interferon production in human peripheral blood mononuclear cells. Infect Immun. 1998;66:6058–6062.

59. Oksaharju A., Kankainen M., Kekkonen R.A. еt al. Probiotic Lactobacillus rhamnosus downregulates FCER1 and HRH4 expression in human mast cells. World J Gastroenterol. 2011;17:750–759.

60. Hatakka K., Savilahti E., Ponka A. etal. Effect of long term con6 sumption of probiotic milk on infections in children attending day care centers: double blind, randomized trial. B.M.J. 2001;322:1351–1367.

61. Davidson L.E., Fiorino A.M., Snydman D.R., Hibberd P.L. Lactobacillus GG as an immune adjuvant for live-attenuated influenza vaccine in healthy adults: a randomized double-blind placebo-controlled trial. Eur J Clin Nutr. 2011;65(4):501-7. doi: 10.1038/ejcn.2010.289.

62. Wang J., Ji H., Wang S., Liu H., Zhang W., Zhang D., Wang Y. Probiotic Lactobacillus plantarum Promotes Intestinal Barrier Function by Strengthening the Epithelium and Modulating Gut Microbiota. Front Microbiol. 2018 Aug 24;9:1953. doi: 10.3389/fmicb.2018.01953.eCollection2018.

63. Wold A.E. Immune effects of probiotics. Scand J Nutr. 2001;45:76-85.

64. Christensen H.R. et al. Lactobacilli differentially modulate expression of cytokines and maturation surface markers in murine dendritic cells. J Immunol. 2002;168:171-78.

65. De Vrese M., Winkler P., Rautenberg P., Harder T., Noah C., Laue C., et al. Effect of Lactobacillus gasseri PA 16/8, Bifidobacterium longum SP 07/3, B. bifidum MF 20/5 on common cold episodes: a double blind, randomized, controlled trial. Clin Nutr. 2005;24(4):479-80.

66. Xu X., Wu X., Wang Q., Cai N., Zhang H., Jiang Z., Wan M., Oda T. Immunomodulatory Effects of Alginate Oligosaccharides on Murine Macrophage RAW264.7 Cellsand Their StructureActivity Relationships. J Agric Food Chem. 2014 Apr 9;62(14):3168-3176. doi: 10.1021/jf405633n.

67. Romeo J., Nova E., Wärnberg J., Gómez-Martínez S., Díaz L. E. Ligia, Marcos A. Immunomodulatory effect of fibres, probiotics and synbiotics in different life-stages. Nutr Hosp. 2010;25(3):341-349.

68. Горелов А.В., Плоскирева А. А., Бондарева А.В., Каннер Е.В. Пробиотики в комплексной профилактике респираторных инфекций. Вопросы практической педиатрии. 2014;5(9).

69. Pregliasco F., Anselmi G., Fonte L., Giussani F., Schieppati S., Soletti L. A new chance of preventing winter diseases by the administration of symbiotic formulations. J Clin Gastroenterol. 2008;42(Suppl 3 Pt2):S224-33.

70. Щеплягина Л.А., Круглова И.В. Возрастные особенности иммунитета у детей. РМЖ. 2009;23. http://www.rmj.ru/articles_6905.htm.


Просмотров: 58


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2079-701X (Print)
ISSN 2658-5790 (Online)