Комплексные протоколы коррекции возрастных изменений, вызванных лекарственно-индуцированной потерей подкожно-жировой клетчатки лица и тела, с помощью препаратов на основе PLA

С ростом популярности агонистов рецептора глюкагоноподобного пептида-1 (GLP-1RA) общественность и сообщество косметологов и пластических хирургов ввели новую терминологию для характеристики некоторых непреднамеренных эффектов этих препаратов. Такие термины, как «лицо Ozempic®» и «тело Ozempic®», получили широкое распространение для обозначения потери объема тканей в результате терапии семаглутидом. Был проведен поиск в Google Trends, чтобы уточнить общественное мнение об агонистах рецептора GLP-1 и их связь с морфологическими изменениями, наблюдаемыми при медикаментозном снижении веса. Существуют некоторые данные, предполагающие, что GLP-1RA может также ускорять старение кожи, воздействуя на клетки в слое жировой ткани и подавляя их пролиферацию и метаболическую активность. GLP-1RA влияет на дермальную белую жировую ткань (DWAT) и стволовые клетки, полученные из жировой ткани (ADSCs), и, возможно, на гормональную регуляцию и мышцы лица. Для коррекции изменений, связанных с риском возникновения резкого увеличения кожного лоскута и потери объема тканей, используется широкий арсенал аппаратных и инъекционных методов. Особое место занимают инъекционные коллагеностимуляторы на основе полимолочной кислоты (PLA). После введения филлеры PLA вызывают дифференциацию макрофагов в подтип M2, который, как известно, индуцирует выработку коллагена за счет увеличения экспрессии TGF-β в фибробластах и является биосовместимым материалом, который гидролизуется до воды и углекислого газа. После введения микросферы PDLLA остаются локализованными в тканях, способствуя привлечению миофибробластов и ADSCs, что актуально для пациентов с лекарственно-индуцированной потерей подкожно-жировой клетчатки. В данном обзоре представлены основные методы коррекции и варианты сочетанных протоколов, приведены клинические случаи.

1. Mansour MR, Hannawa OM, Yaldo MM, Nageeb EM, Chaiyasate K. The rise of “Ozempic Face”: Analyzing trends and treatment challenges associated with rapid facial weight loss induced by GLP-1 agonists. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2024;96:225–227. https://doi.org/10.1016/j.bjps.2024.07.051.

2. Tay JQ. Ozempic face: A new challenge for facial plastic surgeons. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2023;81:97–98. https://doi.org/10.1016/j.bjps.2023.04.057.

3. Carboni A, Woessner S, Martini O, Marroquin NA, Waller J. Natural Weight Loss or “Ozempic Face”: Demystifying A Social Media Phenomenon. J Drugs Dermatol. 2024;23(1):1367–1368. https://doi.org/10.36849/JDD.7613.

4. Ridha Z, Fabi SG, Zubar R, Dayan SH. Decoding the Implications of Glucagon-like Peptide-1 Receptor Agonists on Accelerated Facial and Skin Aging. Aesthet Surg J. 2024;44(11):NP809–NP818. https://doi.org/10.1093/asj/sjae132.

5. Kim Chung le T, Hosaka T, Yoshida M, Harada N, Sakaue H, Sakai T, Nakaya Y. Exendin-4, a GLP-1 receptor agonist, directly induces adiponectin expression through protein kinase A pathway and prevents inflammatory adipokine expression. Biochem Biophys Res Commun. 2009;390(3):613–618. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2009.10.015.

6. Kim WS, Park BS, Kim HK, Park JS, Kim KJ, Choi JS et al. Evidence supporting antioxidant action of adipose-derived stem cells: protection of human dermal fibroblasts from oxidative stress. J Dermatol Sci. 2008;49(2):133–142. https://doi.org/10.1016/j.jdermsci.2007.08.004.

7. Cantini G, Di Franco A, Samavat J, Forti G, Mannucci E, Luconi M. Effect of liraglutide on proliferation and differentiation of human adipose stem cells. Mol Cell Endocrinol. 2015;402:43–50. https://doi.org/10.1016/j.mce.2014.12.021.

8. Zouboulis CC, Gould K. Premature skin ageing signs due to androgen deprivation therapy. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2024;38(2):e197–e198. https://doi.org/10.1111/jdv.19554.

9. Zhang L, Li P, Tang Z, Dou Q, Feng B. Effects of GLP-1 receptor analogue liraglutide and DPP-4 inhibitor vildagliptin on the bone metabolism in ApoE-/mice. Ann Transl Med. 2019;7(16):369. https://doi.org/10.21037/atm.2019.06.74.

10. Chaudhuri J, Bains Y, Guha S, Kahn A, Hall D, Bose N et al. The Role of Advanced Glycation End Products in Aging and Metabolic Diseases: Bridging Association and Causality. Cell Metab. 2018;28(3):337–352. https://doi.org/10.1016/j.cmet.2018.08.014.

11. Doyle AG, Herbein G, Montaner LJ, Minty AJ, Caput D, Ferrara P, Gordon S. Interleukin-13 alters the activation state of murine macrophages in vitro: comparison with interleukin-4 and interferon-gamma. Eur J Immunol. 1994;24(6):1441–1445. https://doi.org/10.1002/eji.1830240630.

12. Wu YH, Cheng ML, Ho HY, Chiu DT, Wang TC. Telomerase prevents accelerated senescence in glucose-6-phosphate dehydrogenase (G6PD)-deficient human fibroblasts. J Biomed Sci. 2009;16(1):18. https://doi.org/10.1186/1423-0127-16-18.

13. Kim HJ, Kim B, Byun HJ, Yu L, Nguyen TM, Nguyen TH et al. Resolvin D1 Suppresses H2O2-Induced Senescence in Fibroblasts by Inducing Autophagy through the miR-1299/ARG2/ARL1 Axis. Antioxidants. 2021;10(12):1924. https://doi.org/10.3390/antiox10121924.

14. Saw CL, Yang AY, Huang MT, Liu Y, Lee JH, Khor TO et al. Nrf2 null enhances UVB-induced skin inflammation and extracellular matrix damages. Cell Biosci. 2014;4:39. https://doi.org/10.1186/2045-3701-4-39.

15. Oh S, Rho NK, Byun KA, Yang JY, Sun HJ, Jang M et al. Combined Treatment of Monopolar and Bipolar Radiofrequency Increases Skin Elasticity by Decreasing the Accumulation of Advanced Glycated End Products in Aged Animal Skin. Int J Mol Sci. 2022;23(6):2993. https://doi.org/10.3390/ijms23062993.

16. Duan W, Zhang R, Guo Y, Jiang Y, Huang Y, Jiang H, Li C. Nrf2 activity is lost in the spinal cord and its astrocytes of aged mice. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2009;45(7):388–397. https://doi.org/10.1007/s11626-009-9194-5.

17. Magacho-Vieira FN, Vieira AO, Soares A Jr, Alvarenga HCL, de Oliveira Junior IRA, Daher JAC et al. Consensus Recommendations for the Reconstitution and Aesthetic Use of Poly-D,L-Lactic Acid Microspheres. Clin Cosmet Investig Dermatol. 2024;17:2755–2765. https://doi.org/10.2147/CCID.S497691.

18. Lee KWA, Chan LKW, Lee AWK, Lee CH, Wong STH, Yi KH. Poly-D,L-lactic Acid (PDLLA) Application in Dermatology: A Literature Review. Polymers. 2024;16(18):2583. https://doi.org/10.3390/polym16182583.

19. Lin CY, Lin JY, Yang DY, Lee SH, Kim JY, Kang M. Efficacy and safety of polyD,L-lactic acid microspheres as subdermal fillers in animals. Plast Aesthet Res. 2019;6:16. https://doi.org/10.20517/2347-9264.2019.23.

20. Oh S, Seo SB, Kim G, Batsukh S, Park CH, Son KH, Byun K. Poly-D,L-Lactic Acid Filler Increases Extracellular Matrix by Modulating Macrophages and Adipose-Derived Stem Cells in Aged Animal Skin. Antioxidants. 2023;12(6):1204. https://doi.org/10.3390/antiox12061204.